在提供MgCl2缓冲液中，以0.25mmol/L为梯度增加MgCl2浓度；无MgCl2的缓冲液以0.5mmol/L为梯度增加MgCl2浓度。

　　泳道中出现模糊条带，如果DNA模板中存在RNA，则按上述提示浓度补加MgCl2，因为在PCR反应中可能缺少游离的Mg2+。

　　检查退火温度和变性条件，如果有需要的话，可降低退火温度。

　　检查模板和引物的用量。

　　增加循环次数和/或模板DNA的用量。

　　泳道中出现模糊条带：

　　减少循环次数或模板DNA的用量。

　　提高退火温度，但不要超过68℃。

　　重新设计引物或设计更长的引物。

　　其他值得注意的条件：

　　建议使用0.2-ml薄壁管。厚壁管在92℃时不能有效地使模板变性。

　　最佳反应体积为50ml，推荐用30ml矿物油覆盖（对盖子加热的PCR仪可以不加）。

　　大多数反应中，0.75ml（0.5~1ml）的酶量在大多数情况下可以得到满意的结果。

　　建议使用1.75mmol/LMgCl2∶350mmol/LdNTP或2.25mmol/LMgCl2∶500mmol/LdNTP组合的混合物。然而要得到最佳结果，优化Mg2+的浓度是必需的。

　　基因组DNA模板的质量显著影响PCR反应。因此推荐使用琼脂糖凝胶电泳来检测DNA的长度。DNA片段长度可以超过50kb，传统的基因组DNA能扩增片段至10kb。

　　要扩增更长的片段应使用超纯或高分子量的DNA。请查阅高分子量DNA提取操作过程相关文献。

　　降低二级结构和引物二聚物形成的可能性。进行长片段PCR扩增时，引物长度一般为24~34个核苷酸，溶点在60~68℃间。使用这类引物可提高PCR反应的退火温度来增加反应的特异性。这点非常重要，长片段扩增的效果往往受到非特异性短片段优先扩增的影响。

　　变性：第一步变性在94℃下进行2分钟。在循环过程中尽可能缩短变性时间（94℃下进行20--30秒），除非模板中富含GC，则95℃下变性30秒。这可以防止DNA脱嘌啉和链断裂，对于所需扩增的基因组DNA片段终长度超过12kb时，应该尽可能的降低变性温度。

　　延伸：68--72℃下进行延伸操作。

　　循环延伸：尽量采用循环延伸的条件，若PCR仪无此功能，则必须增加延伸的时间，例如在扩增10kb片断时，延伸时间用10分钟替代原来的8分钟。

　　长片断PCR系统扩增的片断其3’-末端带有一个突出的A，因此建议采用T/A克隆。若要进行平端可隆，可用Klenow酶和T4DNA多聚酶将PCR产物补平后再进行。

　　测序时因酶的混合物带有3’→5’外切酶活性，用Sanger方法进行测序不能产生均一的（染色体）带型。

　　引物设计：

　　一般长度20-30bp；

　　至少50%的GC含量；

　　避免引物二聚体和二级结构；

　　引物对的Tm值应该接近。